1、實操任務：找準神經細胞系可溶性查抄的理論；找準染劑的調制方式方法方法；找準神經細胞系可溶性查抄方式方法方法。

　　2、品嘗理論：細胞毀傷或滅亡時，某些染料可穿透變性的細胞膜，與崩潰的DNA連系，使其著色。而活細胞能禁止這類染料進入細胞內，是以能夠辨別死細胞與活細胞。經常利用的染料有臺盼藍、苯胺黑、結晶紫。

　　3、嘗試資料
　　①臺盼藍、苯胺黑、結晶紫溶液(溶于Hank's液或BSS液)。
　　②冷凍蘇醒后的細胞或其余培育細胞。
　　③研缽、濾膜、漏斗、化學藥品瓶、性子紙、光學顯微鏡、膠頭滴管、鑷子、載玻片、蓋玻片、數值器。

　　4、操縱步驟
　　(1)配制染色液
　　①0.5％臺盼藍法：0.5g臺盼藍加熱溶于100 mLHank's液或BSS液中，貼標簽。
　　②0.05％苯胺黑：0．05 g苯胺黑充實研磨后溶于100 mL Hank's液或BSS液中。苯胺黑對細胞毒性小，但消融度差．配制后需過濾，貼標簽。
　　③0.1％結晶紫(用BSS液配制)法：0.1g結晶紫別離研磨溶于．100mL Hank's液或BSS液中，過濾后貼標簽。

　　(2)制備細胞懸液：調劑細胞濃度在1×106個／mL擺布。

　　(3)染色
　　①0.5％臺盼藍法：取少許細胞懸液，按1：1量插手0.5％臺盼藍染色液，充實混勻。靜置15 min，用膠頭滴管吸收細胞懸液，滴1滴于載坡片上，加蓋玻片。1min后用10x物鏡挪動視線察看，計數100～200個細胞。活細胞圓形通明，死細胞染成藍色，用活細胞占計數細胞中的百分比表現細胞活氣。
　　②0.05％苯胺黑法：利用時，苯胺黑液與細胞懸液以1：10夾雜，稍安排后鏡檢，死細胞染成玄色，活細胞不著色。
　　③0.1％結晶紫法：細胞懸液與結晶紫液等量夾雜后，當即鏡檢，著紫色的為活細胞。

　　5、注重事變
　　①染色時候不能太長，不然活細胞也會逐步堆集染料而染成色彩，使檢測成果偏低。
　　②可連系細胞計數方式，同時停止細胞計數和活氣檢測。
　　③細胞活性查抄是細胞培育的根基手藝。它是檢測差別藥物、生化物資處置等結果的直觀簡潔手腕，也是評定細胞冷凍結果的方式之一。在細胞凍存和蘇醒進程中，因為細胞蒙受非心感性的高溫沖擊等，不可防止地對細胞發生影響，引發局部細胞活氣降落或滅亡，經由過程細胞活性查抄可疾速查驗細胞冷凍結果，是權衡細胞凍存、蘇醒結果的一種簡潔易行的方式：染料解除法是查抄細胞活性經常利用的方式。
　　④查抄貼壁的神經細胞膜時，應該將神經細胞膜助消化其身再立即停止操控。