脂質體（lipofectin regeant，LR）試劑是陽離子脂質體N-[1-2，3-Dioleyoxy，Propyl]-n，n，n-Trimethylammonium Chloride（DOTMA）和Dioleoyl photidye-thanolamine（DOPE）的夾雜物[1：1（w/w）]。它合用于把DNA轉染入懸浮或貼壁培育細胞中，是今朝前提下最便利 的轉染方式之一。轉染率高，優于磷酸鈣法，比它高5~100倍，能把DNA和RNA轉染到各類細胞。

　　用LR停止轉染時，起首需優化轉染前提，應找出該批LR對轉染某一特定細胞合適的用量、感化時候等，對每批LR都要做：第一，先要牢固一個DNA的量和DNA/LR夾雜物與細胞彼此感化的時候，DNA可從1~5μg和孵育時候6小時起頭，按這兩個參數繪出響應LR需用量的曲線，再選用LR和DNA二者最好的劑量，肯定出轉染時候（2~24小時）。因LR對細胞有必然的毒性，轉染時候以不跨越24小時為好。

　　細胞品種：COS-7、BHK、NIH3T3、Hela和Jurkat等任何一種細胞都可作為受體細胞。

　　1、操縱步驟[方式一]：
　　（1）細胞培育：取6孔培育板（或用35mm培育皿），向每孔中插手2mL含1~2×105個細胞培育液，37℃CO2培育至40%~60%會合時（會合過度，轉染后倒霉挑選細胞）。
　　（2）轉染液制備：在聚苯乙稀管中制備以下兩液（為轉染每個孔細胞所用的量）A液：用不含血清培育基濃縮1-10μg DNA，終量100μL，B液：用不含血清培育基濃縮2-50μgLR，終量100μL，悄悄夾雜A、B液，室溫中置10-15分鐘，稍后會呈現微濁景象，但并不故障轉染（如呈現積淀能夠因LR或DNA濃度太高而至，應酌情減量）。
　　（3）轉染籌辦：用2mL不含血清培育液漂洗兩次，再插手1mL不含血清培育液。
　　（4）轉染：把A/B復合物徐徐插手培育液中，搖勻，37℃溫箱置6~24小時，吸除無血清轉染液，換入一般培育液持續培育。
　　（5）其余處置如察看、挑選、檢測等與別的轉染法不異。
　　關注著：轉染時時請加血清，血清對轉染權利有非常大的關系。

　　2、疾速脂質體轉染法操縱步驟以下[方式二]：
　　（1）以5×105細胞/孔接種6孔板（或35mm培育皿）培育24小時，使其到達50~60%板底面積。
　　（2）在試管中配制DNA/脂質體復合物方式以下：
　　①在1mL無血清DMEM中濃縮PSV2-neo質粒DNA或供體DNA。
　　②扭轉1秒鐘，再插手脂質體懸液，扭轉。
　　③室溫下放置5~10分鐘，使DNA連系在脂質體上。
　　（3）棄去細胞中的舊液，用1mL無血清DMEM洗細胞一次后棄去，向每孔中間接插手1mL DNA/脂質體復合物，37℃培育3~5小時。
　　（4）再于每孔中插手20%FCS的DMEM，持續培育14~24小時，
　　（5）吸出DMEM/DNA/脂質體夾雜物插手新穎10%FCS的DMEM，2mL/孔，再培育24~48小時。
　　（6）用細胞刮或消化法搜集細胞，以備闡發判定。

　　3、不變的脂質體轉染方式以下：
　　（1）接種細胞同前，細胞長至50%板底面積可用于轉染。
　　（2）DNA/脂質體復合物制備轉染細胞同前（2）、（3）步驟。
　　（3）在每孔中插手1mL、20%FCS的DMEM，37℃培育48小時。
　　（4）吸出DMEM，用G418挑選培育液濃縮細胞，使細胞發展必然時候，挑選轉染克隆方式參照細胞克隆挑選法停止。